Dissertação de Mestrado
DOI
https://doi.org/10.11606/D.11.2005.tde-06052005-134141
Documento
Autor
Nome completo
Carlos Eduardo Faroni
E-mail
Unidade da USP
Área do Conhecimento
Data de Defesa
Imprenta
Piracicaba, 2004
Orientador
Banca examinadora
Trivelin, Paulo Cesar Ocheuze (Presidente)
Abreu Junior, Cassio Hamilton
Mazza, Jairo Antonio
Título em português
Sistema radicular de cana-de-açúcar e identificação de raízes metabolicamente ativas.
Palavras-chave em português
amostragem
cana-de-açúcar
isótopo estável
manejo do solo
nitrogênio
sistema radicular
uréia
Resumo em português
O conhecimento da dinâmica de crescimento das raízes da cana-de-açúcar, bem
como da arquitetura de seu sistema radicular, permite melhor compreensão das relações
entre a planta e o seu ambiente de produção, possibilitando o manejo a partir de práticas
agrícolas mais eficientes e sustentáveis que resultem em aumento de produtividade e
longevidade da cultura. O presente estudo teve por objetivo desenvolver um método para
determinação da distribuição e do desenvolvimento de raízes metabolicamente ativas de
cana-de-açúcar no solo, por meio da técnica da diluição do isótopo 15N, associado aos
métodos de amostragem com monólito e sonda amostradora de raízes. O experimento foi
realizado em área comercial de cana-de-açúcar na região canavieira de Piracicaba,
Estado de São Paulo, em LATOSSOLO VERMELHO distrófico arenoso, com uma
segunda rebrota do cultivar RB85 5156. O delineamento experimental foi em blocos
subdivididos no tempo, com as amostragens de raízes realizadas a cada 50 a 60 dias de
janeiro a junho de 2004. A uréia foi o veículo de fornecimento do marcador isotópico
15N, por meio de solução aplicada às folhas das plantas. Após colheita da parte aérea,
realizada 96 horas após a aplicação da solução de uréia, foram abertas trincheiras,
transversalmente à linha da cultura, com dimensões de 1 m de comprimento e 1,4 m de
largura. Amostras foram colhidas por meio de monólito nas profundidades de 0 a 20, 20 a 40, 40 a 60 e 60 a 80 cm, na projeção da linha da cultura e lateralmente nas distâncias
de 14 a 42 cm e de 42 a 70 cm da linha da cultura. Outras amostras foram colhidas com
sonda amostradora de raízes, paralelamente à parede interna das trincheiras, a 10 cm de
distância do local onde foram retirados os monólitos, nas mesmas profundidades e nas
distâncias de 28 e 56 cm da linha. Em cada profundidade de amostragem, e na projeção
da linha da cultura, foram separadas amostras de raízes visualmente ativas. Estas
amostras forma consideradas padrão para a determinação por diluição isotópica de raízes
com metabolismo ativo. As determinações do teor de N e de abundância de 15N em
amostras de planta e de solo foram realizadas em um espectrômetro de massas modelo
ANCA-SL da Eurapa Scientific Ltda. Os resultados mostraram que o método da diluição
isotópica com 15N possibilitou avaliar a massa de raízes com metabolismo ativo e sua
distribuição no solo, e o método de amostragem de raízes com a sonda foi viável em
comparação com a amostragem do monólito, nas seguintes condições: na quantificação
de raízes nas profundidades de 0 a 20, 20 a 40 e 60 a 80 cm do perfil do solo para raízes
totais, e nos 20 cm superficiais do solo, profundidade na qual a massa de raízes foi
maior, para raízes metabolicamente ativas.
Título em inglês
Sugar cane root system and identification of roots with active metabolism.
Palavras-chave em inglês
15N
alive roots
isotopic dilution
root growth
sampling method
Resumo em inglês
Knowledge about of sugarcane root growth dynamic, as well as the root system
architecture of sugarcane crop allows understanding better the relationships between the
plant and its environment. This knowledge is important to define the crop management
with most efficiency and using sustainable practices, to increasing both sugarcane crop
yield and longevity. The aim of this study was to evaluate a method in order to
determine sugarcane roots with active metabolism and its distribution and growth in the
soil profile, by using isotopic dilution technique with 15N associated with sampling by
monolite and probe. The experiment was conducted in the sugarcane field, on the region
of Piracicaba, State of São Paulo, Brazil, by using the second rattoon of the variety RB
85 5156, grown in a Rhodic Hapludox. The experimental design was in randomized
blocks, with four replications. The split plot was considered in relation to the time. The
15N tracer was applied in the plants as urea solution. The above ground part of sugarcane
plants were harvested 96 hours after urea solution applications, and trenches with one
meter of length and 1.4 meter width were opened transversely to sugarcane rows.
Samples were taken by monolite in 0-20, 20-40, 40-60 and 60-80 cm of depth in the soil
profile in the row projection and horizontally in the distances of 14 to 42 and 42 to
70 cm from the cane row. Samples were taken by probe in a parallel plan with the internal trench wall at 10 cm of distance from the spot where monolites were collected,
in the same depths and at 28 and 56 cm from the row. Roots visually assumed as
metabolisms active were separated to each sampling depth and to row lateral projection
and were considered standards to determine active roots. Determinations of N contents
and 15N abundance in both plant and soil were carried on a mass spectrometer model
ANCA-SL (Europa Scientific Ltda.). The results showed the isotopic dilution method
with 15N allowed the evaluation of active roots mass and the root distribution in the soil.
The root sampling method with probe was adequate comparing with root sampling by
monolite in trench to quantify roots, in the following conditions: in the soil depths of 0
to 20, 20 to 40 and 60 to 80 cm to total roots; and in the first 20 cm of depth, where the
root mass was higher to active roots.
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Data de Publicação
2005-05-10